Revista Peruana de Medicina Integrativa

Actividad antiinflamatoria in vitro de los polisacáridos sulfatados de Patallus mollis extraídos mediante digestión enzimática

In vitro anti-inflammatory effect of Patallus mollis sulphated polysaccharides extracted by enzymatic digestion

José Luis Enrique García Candela

Instituto Tecnológico de la Producción, Lima, Perú

https://orcid.org/0000-0002-0313-2485

Carlos Daniel Pariona Velarde

Instituto Tecnologico de la Produccion, Lima, Perú

https://orcid.org/0000-0003-3927-2874

Rubén Pablo Londoñe Bailon

Instituto Tecnológico de la Producción, Lima, Perú

https://orcid.org/0000-0003-0483-1699

---

Resumen

Objetivo. Evaluar la actividad antiinflamatoria in vitro de los polisacáridos (PCs) del tegumento de Patallus mollis mediante la prueba de la estabilidad de la membrana celular del glóbulo rojo y la desnaturalización de la albumina. Materiales y métodos. Los especímenes fueron recolectados en la bahía de Pucusana, se identificaron y los PCs se extrajeron mediante digestión enzimática con bromelina (PBr), papaína (PPa) y pepsina (PPe). Se cuantifico el contenido de azucares, sulfatos y proteínas totales mediante métodos colorimétricos. Para la prueba de estabilidad de la membrana, se preparó una solución de glóbulos rojos [10 % v/v], la cual se mezcló con PBS, NaCl [0,36%], y PCs [2000 – 62.5 µg/mL]. Para la prueba de la desnaturalización de la albúmina, la mezcla consistió en suero de albúmina bovina [0,5%] con PCs [2000 – 62.5 µg/mL]. Como controles se utilizó diclofenaco sódico y agua destilada. El análisis de resultados fue en base a la absorbancia medida en un espectrofotómetro de placas a 420 y 660 nm, según las pruebas respectivamente. Resultados: Los PCs presentaron niveles elevados de azucares y proteínas totales, asi como presencia de sulfatos totales. Además los PCs exhibieron una capacidad estabilizadora de la membrana, siendo la máxima presentada por PBr a una concentración de 62.5 µg/mL. Solo el PPa presentó inhibición de la desnaturalización de albúmina inducida por calor a una dosis de 2000 µg/mL. Conclusión: Nuestros resultados sugieren que los PCs tiene actividades antiinflamatorias y son candidatos potenciales para la formulación de un ingrediente alimentario funcional y / o fármaco para tratar enfermedades inflamatorias.

---

Referencias

Boubekri N, Belloum Z, Boukaabache R, Amrani A, Kahoul N, Hamama W, et al. In vivo anti-inflammatory and in vitro antioxidant activities of Genista quadriflora munby extracts. Pharm Lett. 2014;6(1):1–7.

Sebban H, Courtois G. NF-κB and inflammation in genetic disease. Biochem Pharmacol. 2006;72(Supp 9):1153–60.

Lawrence T. Inflammation and cancer: a failure of resolution? Trends Pharmacol Sci. 2007;28(4):162–5.

Solinas G, Germano G, Mantovani A, Allavena P. Tumorassociated macrophages (TAM) as major players of the cancer-related inflammation. J Leukoc Biol. 2009;86(5):1065–73.

Huang SS, Chiu CS, Lin TH, Lee MM, Lee CY, Chang SJ, et al. Antioxidant and anti-inflammatory activities of aqueous extract of Centipeda minima. J Ethnopharmacol. 2013;147(2):395–405.

Henry D, McGettigan P. Epidemiology overview of gastrointestinal and renal toxicity of NSAIDs. Int J Clin Pract Suppl. 2003;(135):43–9.

Purcell SW, Mercier A, Conand C, Hamel J-F, Toral-Granda MV, Lovatelli A, et al. Sea cucumber fisheries: global analysis of stocks, management measures and drivers of overfishing. Fish Fish. 2013;14(1):34–59.

Bordbar S, Anwar F, Saari N. High-Value Components and Bioactives from Sea Cucumbers for Functional Foods—A Review. Mar Drugs. 2011;9(12):1761–805.

Janakiram NB, Mohammed A, Rao C V. Sea Cucumbers Metabolites as Potent Anti-Cancer Agents. Mar Drugs. 2015;13:2909–23.

Xu SX, Li C, Gao X, Lou Y. Citation: Cytotoxic effects of S1, S2, P1 and P2 on S180 cells. J Clin Cell Immunol. 2011;2(1):1052155–9899.

Song M, Park DK, Cho M, Park HJ. Anti-inflammatory and anti-allergic activities of sea cucumber (Stichopus japonicus) extract. Food Sci Biotechnol. 2013; 22(6):1661- 1666.

García V, Huerto M, Cervantes C, León J, Córdova N. Caracterización ambiental y potencial pesquero 2004- 2011: Bahía de Samanco, Chimbote, Perú. Vol. 40, Inf Inst Mar Perú. Bahía de Samanco; 2013.

Dubois M, Gilles K, Hamilton J, Rebers P, Smith F. Colorimetric method for determination of sugars and related substances. Anal Chem. 1956;28(3):350–6.

Saito H, Yamagata T, Suzuki S. Enzymatic methods for the determination of small quantities of isomeric chondroitin sulfates. J Biol Chem. 1968;243(7):1536–42.

Lowry OH, Rosenbrough NJ, Farr AL, Randall RJ. Protein measurement with the folin. J Biol Chem. 1951;193(1):265–75.

Manvar MN, Desai TR. In-vitro anti-inflammatory and anti-arthritic activities of fruits of Vernonia anthelmintica willd. Asian Pharma Press. 2014;4(4):186–8.

Sachan N, Chandra P, Pal D. Lysosomal membrane and protein stabilization by Dalbergia sissoo (Family: Fabaceae): In vitro anti-inflammatory activity. Int J Pharm Pharm Sci. 2015;7(5):105–7.

Kumari CS, Yasmin N, Hussain MR, Babuselvam M. Invitro anti-inflammatory and anti-artheritic property of Rhizopora mucronata leaves. Int J Pharma Sci Res. 2015;6(3):482–5.

Chou CT. The antiinflammatory effect of an extract of Tripterygium wilfordii Hook F on adjuvant-induced paw oedema in rats and inflammatory mediators release. Phytother Res. 1997;11(2):152–4.

Veena CK, Josephine A, Preetha SP, Varalakshmi P. Effect of sulphated polysaccharides on erythrocyte changes due to oxidative and nitrosative stress in experimental hyperoxaluria. Hum Exp Toxicol. 2007;26(12):923–32.

das Chagas Faustino Alves MG, Dore CMPG, Castro AJG, do Nascimento MS, Cruz AKM, Soriano EM, et al. Antioxidant, cytotoxic and hemolytic effects of sulfated galactans from edible red alga Hypnea musciformis. J Appl Phycol. 2012;24(5):1217–27.

Soltani M, Parivar K, Baharara J, Kerachian MA, Asili J. Hemolytic and cytotoxic properties of saponin purified from Holothuria leucospilota sea cucumber. Rep Biochem Mol Biol. 2014;3(1):1–8.

Neucere JN, Godshall MA, Roberts EJ. Hemolytic activity in crude polysaccharide extracted from grain sorghum [Sorghum bicolor (L.) Moench]. Toxicon Off J Int Soc Toxinology. 1986;24(3):305–8.

Friedman M. Mushroom Polysaccharides: Chemistry and Antiobesity, Antidiabetes, Anticancer, and Antibiotic Properties in Cells, Rodents, and Humans. Foods. 2016;5(4):80.

Jiao G, Yu G, Zhang J, Ewart HS. Chemical Structures and Bioactivities of Sulfated Polysaccharides from Marine Algae. Mar Drugs. 2011;9(2):196–223.

Sutter M, Oliveira S, Sanders NN, Lucas B, Van Hoek A, Hink MA, et al. Sensitive spectroscopic detection of large and denatured protein aggregates in solution by use of the fluorescent dye nile red. J Fluoresc. 2007;17(2):181– 92.

Zhao Y, Li F, Carvajal MT, Harris MT. Interactions between bovine serum albumin and alginate: An evaluation of alginate as protein carrier. J Colloid Interface Sci. 2009;332(2):345–53.

Belmiro CLR, Castelo-Branco MTL, Melim LMC, Schanaider A, Elia C, Madi K, et al. Unfractionated heparin and new heparin analogues from ascidians (chordate-tunicate) ameliorate colitis in rats. J Biol Chem. 2009;284(17):11267–78.

Sanjeewa KKA, Fernando IPS, Kim E-A, Ahn G, Jee Y, Jeon Y-J. Anti-inflammatory activity of a sulfated polysaccharide isolated from an enzymatic digest of brown seaweed Sargassum horneri in RAW 264.7 cells. Nutr Res Pract. 2017;11(1):3–10.