La medicina complementaria en el tratamiento de las enfermedades tropicales desatendidas: accidentes ofi­dicos

Complementary Medicine in treatment of neglected tropical diseases: Ophidian accidents

Braulio Mark Valencia

Medico infectologo, magi­ster en Control de Enfermedades Infecciosas y Tropicales. Departamento Academico de Ciencias Celulares y Moleculares, Facultad de Ciencias y Filosofi­a, Universidad Peruana Cayetano Heredia, Lima, Peru. Instituto de Medicina Tropical "Alexander von Humboldt", Universidad Peruana Cayetano Heredia, Lima, Peru.

Alfonso Zavaleta

Medico cirujano, doctor en Farmacologi­a. Departamento Academico de Ciencias Celulares y Moleculares, Facultad de Ciencias y Filosofia, Universidad Peruana Cayetano Heredia, Lima, Peru. Instituto de Medicina Tropical “Alexander von Humboldt”, Universidad Peruana Cayetano Heredia, Lima, Perú.


Resumen

De acuerdo con la Organización Mundial de la Salud más de 1 billón de personas distribuidas en 149 países son afectadas por enfermedades tropicales desatendidas, ocasionando cuantiosos daños económicos, sociales y psicológicos a los afectados, así como un elevado gasto estatal. El envenenamiento por mordedura de serpiente es una de las más desatendidas: se estima que anualmente de los casi 5 millones de mordeduras de serpiente que ocurren a nivel mundial, la mitad genera envenenamientos que ocasionarían entre 94-125 mil muertes, 400 mil amputaciones y otras secuelas severas. Por ello, se realizó una búsqueda en Pubmed para identificar publicaciones en los que se hayan usado terapias complementarias o tradicionales o alguno de sus componentes. De los 142 artículos, 18 fueron seleccionados por tratarse de estudios in vivo para identificar el efecto antiofídico de los compuestos. Los estudios seleccionados se enfocaron en evaluar el efecto antihemorrágico (13/18), antiedematoso (11/18), antinecrotizante (5/18) y de reducción de letalidad (4/18). Se estudió el efecto de los compuestos en veneno de Bothrops atrox (6/18), Bothrops jararaca(5/18), Bothrops asper (3/18), Bothrops jararacussu (2/18), Bothrops erythromelas (2/18), Bothrops paulensis (1/18), Crotalus adamanteus (1/18), Crotalus durissus terrificus (1/18), y Lachesis muta (1/18). De las 24 plantas evaluadas, se encontró mayor cantidad de publicaciones sobre el efecto terapéutico de Bellucia dichotoma, Connarus favosus, Plathymenia reticulata, Jatropha gossypiifolia y Renealmia alpinia.

Descargas

Los datos de descargas todavía no están disponibles.

Referencias

World Health Organization. Investing to Overcome the Global Impact of Neglected Tropical Diseases: Third WHO Report on Neglected Tropical Diseases 2015. Vol. 3. World Health Organization; 2015.

Daumerie D, Savioli L, Crompton DWT, Peters P. Working to overcome the global impact of neglected tropical diseases: first WHO report on neglected tropical diseases. Vol. 1. World Health Organization; 2010.

Rosenthal PJ. Antimalarial chemotherapy: mechanisms of action, resistance, and new directions in drug discovery. Springer Science & Business Media; 2001.

Gelband H, Panosian C, Arrow KJ. Saving lives, buying time: economics of malaria drugs in an age of resistance. National Academies Press; 2004.

de Silva HJ, Kasturiratne A, Pathmeswaran A, Lalloo DG. Snakebite: the true disease burden has yet to be determined. Ceylon Med J. septiembre de 2013;58(3):93-5.

Gutiérrez JM, Theakston RDG, Warrell DA. Confronting the Neglected Problem of Snake Bite Envenoming: The Need for a Global Partnership. PLoS Med [Internet]. junio de 2006 [citado 4 de julio de 2017];3(6). Disponible en: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC1472552/

Warrell DA. Guidelines for the management of snake-bites. Guidel Manag Snake-Bites. 2010;

Bhat RN. Viperine snake bite poisoning in Jam-mu. J Indian Med Assoc. 16 de diciembre de 1974;63(12):383-92.

León G, Herrera M, Segura Á, Villalta M, Vargas M, Gutiérrez JM. Pathogenic mechanisms underlying adverse reactions induced by intravenous administration of snake antivenoms. Toxicon. 15 de diciembre de 2013;76:63-76.

Nuchpraryoon I, Garner P. Interventions for prevent-ing reactions to snake antivenom. Cochrane Data-base Syst Rev. 2000;(2):CD002153.

Bucherl W, Buckley EE, Deulofeu V. Venomous animals and their venoms. 1971;

Harvey AL. Snake toxins. Vol. 134. Pergamon; 1991.

Warrell DA. Snake bite. The Lancet. 2010;375(9708):77-88.

Gans C, Gans C. Biology of the Reptilia. 1969.

Patiño AC, López J, Aristizábal M, Quintana JC, Benjumea D. [Evaluation of the inhibitory effect of extracts from leaves of Renealmia alpinia Rottb. Maas (Zingiberaceae) on the venom of Bothrops asper(mapaná)]. Biomed Rev Inst Nac Salud. septiembre de 2012;32(3):365-74.

Patiño AC, Quintana JC, Gutiérrez JM, Rucavado A, Benjumea DM, Pereañez JA. Extracts of Renealmia alpinia (Rottb.) MAAS Protect against Lethality and Systemic Hemorrhage Induced by Bothrops asper Venom: Insights from a Model with Extract Administration before Venom Injection. Toxins. 30 de abril de 2015;7(5):1532-43.

Fernandes JM, Félix-Silva J, da Cunha LM, Gomes JADS, Siqueira EM da S, Gimenes LP, et al. Inhibitory Effects of Hydroethanolic Leaf Extracts of Kalanchoe brasiliensis and Kalanchoe pinnata (Crassulaceae) against Local Effects Induced by Bothrops jararaca Snake Venom. PloS One. 2016;11(12):e0168658.

Moussatché H, Perales J. Factors underlying the natural resistance of animals against snake venoms. Mem Inst Oswaldo Cruz. 1989;84:391-4.

Bastos VA, Gomes-Neto F, Perales J, Neves-Ferreira AGC, Valente RH. Natural Inhibitors of Snake Venom Metalloendopeptidases: History and Current Challenges. Toxins. 26 de agosto de 2016;8(9).

Perumal Samy R, Gopalakrishnakone P, Chow VT. Therapeutic application of natural inhibitors against snake venom phospholipase A(2). Bioinformation. 2012;8(1):48-57.

de Moura VM, Freitas de Sousa LA, Cristina Dos-Santos M, Almeida Raposo JD, Evangelista Lima A, de Oliveira RB, et al. Plants used to treat snakebites in Santarém, western Pará, Brazil: an assessment of their effectiveness in inhibiting hemorrhagic activity induced by Bothrops jararaca venom. J Ethnopharmacol. 23 de febrero de 2015;161:224-32.

Mourão de Moura V, Serra Bezerra AN, Veras Mourão RH, Varjão Lameiras JL, Almeida Raposo JD, Luckwu de Sousa R, et al. A comparison of the ability of Bellucia dichotomaCogn. (Melastomataceae) extract to inhibit the local effects of Bothrops atrox venom when pre-incubated and when used according to traditional methods. Toxicon Off J Int Soc Toxinology. julio de 2014;85:59-68.

de Moura VM, de Souza LYA, da Costa Guimarães N, Dos Santos IGC, de Almeida PDO, de Oliveira RB, et al. The potential of aqueous extracts of Bellucia dichotoma Cogn. (Melastomataceae) to inhibit the biological activities of Bothrops atrox venom: A comparison of specimens collected in the states of Pará and Amazonas, Brazil. J Ethnopharmacol. 20 de enero de 2017;196:168-77.

Silva TP da, Moura VM de, Souza MCS de, Santos VNC, Silva KAMM da, Mendes MGG, et al. Connarus favosus Planch.: An inhibitor of the hemorrhagic activity of Bothrops atrox venom and a potential antioxidant and antibacterial agent. J Ethnopharmacol. 13 de mayo de 2016;183:166-75.

de Moura VM, da Silva WCR, Raposo JDA, Freitas-de-Sousa LA, Dos-Santos MC, de Oliveira RB, et al. The inhibitory potential of the condensed-tannin-rich fraction of Plathymenia reticulata Benth. (Fabaceae) against Bothrops atrox envenomation. J Ethnopharmacol. 13 de mayo de 2016;183:136-42.

Fernandes FFA, Tomaz MA, El-Kik CZ, Monteiro-Machado M, Strauch MA, Cons BL, et al. Counteraction of Bothropssnake venoms by Combretum leprosum root extract and arjunolic acid. J Ethnopharmacol. 8 de agosto de 2014;155(1):552-62.

Strauch MA, Tomaz MA, Monteiro-Machado M, Ricardo HD, Cons BL, Fernandes FFA, et al. Antiophidic activity of the extract of the Amazon plant Humirianthera amplaand constituents. J Ethnopharmacol. 9 de enero de 2013;145(1):50-8.

Félix-Silva J, Souza T, Menezes YAS, Cabral B, Câmara RBG, Silva-Junior AA, et al. Aqueous leaf extract of Jatropha gossypiifolia L. (Euphorbiaceae) inhibits enzymatic and biological actions of Bothrops jararaca snake venom. PloS One. 2014;9(8):e104952.

Félix-Silva J, Gomes JAS, Xavier-Santos JB, Passos JGR, Silva-Junior AA, Tambourgi DV, et al. Inhibition of local effects induced by Bothrops erythromelas snake venom: Assessment of the effectiveness of Brazilian polyvalent bothropic antivenom and aqueous leaf extract of Jatropha gossypiifolia. Toxicon Off J Int Soc Toxinology. enero de 2017;125:74-83.

Gomes JADS, Félix-Silva J, Morais Fernandes J, Geraldo Amaral J, Lopes NP, Tabosa do Egito ES, et al. Aqueous Leaf Extract of Jatropha mollissima (Pohl) Bail Decreases Local Effects Induced by Bothropic Venom. BioMed Res Int. 2016;2016:6101742.

Samy RP, Thwin MM, Gopalakrishnakone P, Ignacimuthu S. Ethnobotanical survey of folk plants for the treatment of snakebites in Southern part of Tamilnadu, India. J Ethnopharmacol. 17 de enero de 2008;115(2):302-12.

Picanço LCDS, Bittencourt JAHM, Henriques SVC, da Silva JS, Oliveira JM da S, Ribeiro JR, et al. Pharmacological activity of Costus spicatus in experimental Bothrops atrox envenomation. Pharm Biol. octubre de 2016;54(10):2103-10.

Mendes MM, Oliveira CF, Lopes DS, Vale LHF, Alcântara TM, Izidoro LFM, et al. Anti-snake venom properties of Schizolobium parahyba (Caesalpinoideae) aqueous leaves extract. Phytother Res PTR. julio de 2008;22(7):859-66.

Núñez V, Otero R, Barona J, Saldarriaga M, Osorio RG, Fonnegra R, et al. Neutralization of the edema-forming, defibrinating and coagulant effects of Bothrops aspervenom by extracts of plants used by healers in Colombia. Braz J Med Biol Res Rev Bras Pesqui Medicas E Biol. julio de 2004;37(7):969-77.

Coriolano de Oliveira E, Alves Soares Cruz R, de Mello Amorim N, Guerra Santos M, Carlos Simas Pereira Junior L, Flores Sanchez EO, et al. Protective Effect of the Plant Extracts of Erythroxylum sp. against Toxic Effects Induced by the Venom of Lachesis muta Snake. Mol Basel Switz. 11 de octubre de 2016;21(10).

footer_infoedutec